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Academic Year of Degree: 2025/26

18211 - METHODS IN BIOCHEMISTRY

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Teaching Plan Information

Code - Course title:
18211 - METHODS IN BIOCHEMISTRY
Degree:
531 - Graduado/a en Bioquímica
829 - Microtítulo en Biología Molecular para Ciencias Experimentales
Faculty:
104 - Facultad de Ciencias
Academic year:
2025/26

1. Course details

1.1. Content area

Biochemical Methodology ( Biochemical Methods Module and Molecular Systems Biology)

1.2. Course nature

Compulsory

1.3. Course level

531 - Grado (EQF/MECU 6)
829 - Estudios Propios (EQF/MECU 6)

1.4. Year of study

531 - Graduado/a en Bioquímica: 2
829 - Microtítulo en Biología Molecular para Ciencias Experimentales: 1

1.5. Semester

First semester

1.6. ECTS Credit allotment

6.0

1.7. Language of instruction

Español

1.8. Prerequisites

None.

1.9. Recommendations

It is recommended to have overcome the subjects taught in the first year and have good English knowledge that allows the student to read bibliography of consultation.

1.10. Minimum attendance requirement

Assistance to Theoretical Classes is highly recommended. Assistance to seminars and practical classes is mandatory.

1.11. Subject coordinator

Eva Maria Porlan Alonso

  https://autoservicio.uam.es/paginas-blancas/

1.12. Competences and learning outcomes

1.12.1. Competences / Results of the training and learning outcomes

Specific competences

CE1.- Understand the physical and chemical bases of biological processes at the cellular and molecular level and learn about the tools used to research and acquire mathematical, statistical and computer skills to obtain, analyze and interpret data from biological systems.

CE15.- Know the principles, instrumentation and experimental methods used in Biochemistry and Molecular Biology, both in vivo and in vitro and their applications.

CE16.- Know the basic techniques of cell cultures (with an emphasis on animal cells), as well as cell and tissue processing for subcellular orgánulo preparations.

CE17.- Acquire the ability to work accurately, safely, reproducible, rigorous and responsible with biological and chemical material in the laboratories of Biochemistry and Molecular Biology.

CE19.- Ability to raise hypothesis and solve problems using the scientific method, as well as to understand the limitations of experimental approaches.

General competencies

CG2.- Know how to apply knowledge in Biochemistry and Molecular Biology to the professional world, especially in the areas of research and teaching, and of biosanitary activities, including the ability to resolve issues and problems in the field of Molecule Biosciences using the scientific method.

CG3.- Ability to collect and interpret relevant data within the area of Biochemistry and Molecular Biology, as well as to draw conclusions and critically reflect on them in different relevant topics in the field of Molecule Biosciences.

CG4.- Capacity to transmit information, ideas, problems and solutions within the area of Biochemistry and Molecular Biology, including the ability to communicate fundamental aspects of your professional activity to other professionals in your area, or related areas, and to a non-specialized public

CG5.- To have developed the learning skills necessary to undertake subsequent studies of specialization with a high degree of autonomy, including the ability to assimilate the different scientific and technological innovations that are taking place in the field of Molecule Biosciences.

Cross-cutting competencies

CT1.- Critical and self-critical reasoning capacity.

CT2.- Capacity to work as a team in a collaborative manner and with shared responsibility.

CT4.- Learning capacity and self-employment.

CT5.- Ability to apply the principles of the scientific method.

CT6.- Ability to recognize and analyze a problem, identifying its essential components, and planning a scientific strategy to solve it.

1.12.2. Learning outcomes

  1. Solve issues and problems in the area of Biochemistry and Molecular Biology through scientific hypotheses that can be examined through the use of the explained techniques
  2. Choosing among a set of basic techniques the most appropriate to address a certain objective in the area of Biochemistry and Molecular Biology
  3. Identify the controls necessary to carry out biochemical experimentation in the different techniques with which the student has become familiar in the subject.
  4. Design simple experiments by applying the knowledge of the techniques explained, understanding the limitations of experimental approaches

1.12.3. Course objectives

The aim of this subject is to get the student to understand the theoretical bases of a set of techniques widely used in the field of Biochemistry and Molecular Biology. In parallel, problem solving and discussion of practical examples are encouraged to learn how to apply the theoretical knowledge acquired. Through the teaching methodology employed and the training activities developed throughout the course, the student will be able to achieve the learning results.

1.13. Course contents

PROGRAMME OF THEORIA

SUBCELULARES AISLAMIENT

1. General introduction. Experimentation in Biochemistry and Molecular Biology. CELL FRACTION. Introduction. Cell breakage techniques.

ELECTROFORESIS

2. Introduction. Behavior of a particle in an electric field. Electrophoretic mobility.

3. Free electrophoresis. Zone electrophoresis. Electrophoresis in polyacrylamide gels

4. Protein electrophoresis in denaturalizing conditions and in native conditions.

5. Transfer techniques for proteins.

6. Electrofocus. Two-dimensional electrophoresis. Protein visualization.

7. Electrophoresis of nucleic acids. Transfer techniques for nucleic acids.

8. Electrophoresis applications to problems of biological interest.

9. Mass spectrometry.

10. Quantitative protein

CENTRIFUGATION

11. Behavior of a particle in a centrifugal field. Basic concepts: sedimentation speed, sedimentation coefficient, sedimentation time, relative centrifugal field.

12. Types of rotor. Centrifugal types. Differential centrifugation.

13. Centrifugation in density gradient. Centrifugation by sedimentation rate. Centrifugation by sedimentation balance. S-lived diagram.

14. Characterization of a process of purification of subcellular orgies.

15. Analytical centrifugation: General principles and utility.

16. General applications of centrifugation to problems of biological interest.

CROMATOGRAPHY

17. Chromatographic techniques. Introduction. Cast and adsorption

18. Column chromatography: basic bases and operations.
19. Molecular exclusion Chromatography: Theoretical Foundations. Useful parameters.

20. Molecular exclusion chromatography: Types of commercial supports: properties and choice. Distribution coefficient and molecular size.

21. Molecular exclusion Chromatography: Separation by size, salt removal, tampon change, etc. Examples.

22. Ionic exchange chromatography: Theoretical foundations. Types of supports, properties and choice.

23: Chromatography of ionic exchange: Conditions of union of the sample and of the circumcision thereof. Importance of the gradient of elution.

24. Ionic exchange chromatography: Advantages of the column method in front of the method by tandas or `batch¿. Applications and examples.

25. Chromatography of affinity: Theoretical foundations. Types of supports. Group support. Union/elution of the sample.

26. Affinity chromatography: Monoclonal antibodies and polyclonal antibodies in affinity chromatography for the study of protein interactions. Co-immunoprecipitation tests.

27. Affinity Chromatography: Pull-down Tests.

28. High resolution liquid chromatography: Theoretical foundations. Types of supports and their choice. Reverse phase. Advantages against conventional chromatography. Applications.

MACROMOLÉCULA MARCH TECHNIQUES. INMUNOTÉCNICAS

29. Radiochemical methods. Introduction. Radioactive disintegration laws. Analysis of the results of radioactivity measures. Autoradiography.

30. Immunotechnics. Types of molecules (antigen/antibody) with different markings and their usefulness. Advantages of immunotechnics in solid phase.

31. Quantitative immunotechnics (ELISA RIA, etc.)

AGENDA OF SEMINARS

The seminars, delivered in smaller groups, will be for the

Trouble resolution

Discussion of experimental assumptions

Review and discussion of some publications especially relevant to the development of some of the Biochemistry and Molecular Biology Techniques.

1.14. Course bibliography

-

2. Teaching-and-learning methodologies and student workload

2.1. Contact hours

 

#horas

Contact hours (minimum 33%)

 

Independent study time

 

2.2. List of training activities

Activity

# hours

Lectures

 

Seminars

 

Practical sessions

 

Clinical sessions

 

Computer lab

 

 

 

Laboratory

 

Work placement

 

Supervised study

 

Tutorials

 

Assessment activities

 

Other

 

3. Evaluation procedures and weight of components in the final grade

3.1. Regular assessment

The learning results related to the competencies listed above will be evaluated as follows:

TEORIA: There will be a final examination at the end of the semester in which all the contents of the subject will be included with a value of 70% of the final note.

During the course, it will take into account the resolution of the problems proposed in class, the participation and involvement in the discussions, questions and debates, as well as the assessments of progress made, with a value of 30% of the final note.

In this way the training acquired by the student throughout the course will be evaluated through different methods and also a final evaluation will be carried out with all the contents of the matter in order to have a global vision of the learning and acquisition of the skills acquired by the student.

3.1.1. List of evaluation activities

Evaluatory activity

%

Final exam

 

Continuous assessment

 

3.2. Resit

In the extraordinary call the procedures, evaluation criteria and percentage in the final qualification will be the same as in the ordinary call.

3.2.1. List of evaluation activities

Evaluatory activity

%

Final exam

 

Continuous assessment

 

4. Proposed workplan

Week

Week

Contents

Contents

Presence hours

Contact hours

Non-permanent hours

Independent time study

1

FRACTIONING

Item 1

3

6

1-2

ELECTROFORESIS

Items 2-4

4

6

2-3

ELECTROFORESIS

Items 5- 8

5

6

3

ELECTROFORESIS

Items 9-10

2

4

4-5

CENTRIFUGATION

Items 11 - 12

5

6

5-6

CENTRIFUGATION

Items 13 - 14

5

6

7

CENTRIFUGATION

Items 15 - 16

2

6

7-8

CROMATOGRAPHY

Items 17-21


6

9

9

CROMATOGRAPHY

Items 22-24

4

6

10-11

CROMATOGRAPHY

Items 25-28

9

13

12-13

MACROMOLECULA MARCH

Items 29-31

7

9


Curso Académico: 2025/26

18211 - METODOLOGÍA BIOQUÍMICA


Información del Plan Docente

Código - Nombre:
18211 - METODOLOGÍA BIOQUÍMICA
Titulación:
531 - Graduado/a en Bioquímica
829 - Microtítulo en Biología Molecular para Ciencias Experimentales
Centro:
104 - Facultad de Ciencias
Curso Académico:
2025/26

1. Detalles de la asignatura

1.1. Materia

Metodología Bioquímica (Módulo Métodos Bioquímicos y Biología Molecular de Sistemas)

1.2. Carácter

Obligatoria

1.3. Nivel

531 - Grado (MECES 2)
829 - Estudios Propios (MECES 2)

1.4. Curso

531 - Graduado/a en Bioquímica: 2
829 - Microtítulo en Biología Molecular para Ciencias Experimentales: 1

1.5. Semestre

Primer semestre

1.6. Número de créditos ECTS

6.0

1.7. Idioma

Español

1.8. Requisitos previos

Ninguno.

1.9. Recomendaciones

Se recomienda haber superado las materias impartidas en el primer año y tener buen conocimiento de inglés que permita al alumno leer bibliografía de consulta.

1.10. Requisitos mínimos de asistencia

La asistencia a Clases Teóricas es muy recomendable. La asistencia a Seminarios y clases prácticas es obligatoria.

1.11. Coordinador/a de la asignatura

Eva Maria Porlan Alonso

  https://autoservicio.uam.es/paginas-blancas/

1.12. Competencias y resultados del aprendizaje

1.12.1. Competencias / Resultados del proceso de formación y aprendizaje

Competencias específicas

CE1.- Entender las bases físicas y químicas de los procesos biológicos a nivel celular y molecular y conocer las herramientas empleadas para investigarlas y adquirir las habilidades matemáticas, estadísticas e informáticas para obtener, analizar e interpretar datos de sistemas biológicos.

CE15.- Conocer los principios, instrumentación y métodos experimentales utilizados en Bioquímica y Biología Molecular, tanto in vivo como in vitro y sus aplicaciones.

CE16.- Conocer las técnicas básicas de cultivos celulares (con un énfasis en las células animales), así como las de procesamiento de células y tejidos para obtener preparaciones de orgánulos subcelulares.

CE17.- Adquirir la capacidad de trabajar de forma precisa, segura, reproducible, rigurosa y responsable con material biológico y químico en los laboratorios de Bioquímica y Biología Molecular.

CE19.- Capacidad de plantear hipótesis y resolver problemas empleando el método científico, así como de entender las limitaciones de las aproximaciones experimentales.

Competencias Generales

CG2.- Saber aplicar los conocimientos en Bioquímica y Biología Molecular al mundo profesional, especialmente en las áreas de investigación y docencia, y de actividades biosanitarias, incluyendo la capacidad de resolución de cuestiones y problemas en el ámbito de las Biociencias Moleculares utilizando el método científico.

CG3.- Capacidad de reunir e interpretar datos relevantes dentro del área de la Bioquímica y Biología Molecular, así como de extraer conclusiones y reflexionar críticamente sobre las mismas en distintos temas relevantes en el ámbito de las Biociencias Moleculares.

CG4.- Capacidad para transmitir información, ideas, problemas y soluciones dentro del área de la Bioquímica y Biología Molecular, incluyendo la capacidad de comunicar aspectos fundamentales de su actividad profesional a otros profesionales de su área, o de áreas afines, y a un público no especializado

CG5.- Haber desarrollado las habilidades de aprendizaje necesarias para emprender estudios posteriores de especialización con un alto grado de autonomía, incluyendo la capacidad de asimilación de las distintas innovaciones científicas y tecnológicas que se vayan produciendo en el ámbito de las Biociencias Moleculares.

 

Competencias transversales

CT1.- Capacidad de razonamiento crítico y autocrítico.

CT2.- Capacidad para trabajar en equipo de forma colaborativa y con responsabilidad compartida.

CT4.- Capacidad de aprendizaje y trabajo autónomo.

CT5.- Capacidad para aplicar los principios del método científico.

CT6.- Capacidad para reconocer y analizar un problema, identificando sus componentes esenciales, y planear una estrategia científica para resolverlo.

       

1.12.2. Resultados de aprendizaje

  1. Resolver cuestiones y problemas en el área de la Bioquímica y la Biología Molecular a través de hipótesis científicas que puedan examinarse mediante el uso de las técnicas explicadas
  2. Elegir entre un conjunto de técnicas básicas la más adecuada para abordar un determinado objetivo en el área de la Bioquímica y la Biología Molecular
  3. Identificar los controles necesarios para llevar a cabo la experimentación bioquímica en las diferentes técnicas con las que el alumno se ha familiarizado en la asignatura.
  4. Diseñar experimentos sencillos aplicando el conocimiento de las técnicas explicadas, entendiendo las limitaciones de las aproximaciones experimentales

1.12.3. Objetivos de la asignatura

El objetivo de esta asignatura es conseguir que el alumno comprenda las bases teóricas de un conjunto de técnicas ampliamente utilizadas en el campo de la Bioquímica y la Biología Molecular. En paralelo, se fomenta la resolución de problemas y la discusión de ejemplos prácticos para aprender a aplicar los conocimientos teóricos adquiridos. A través de la metodología docente empleada y las actividades formativas desarrolladas a lo largo del curso, el estudiante será capaz de alcanzar los resultados de aprendizaje.

1.13. Contenidos del programa

PROGRAMA DE TEORIA

 

AISLAMIENTO DE PARTICULAS SUBCELULARES

1. Introducción general. La experimentación en Bioquímica y Biologia Molecular. FRACCIONAMIENTO CELULAR. Introducción. Técnicas de rotura celular.

 

ELECTROFORESIS

2. Introducción. Comportamiento de una partícula en un campo eléctrico. Movilidad electroforética.

3. Electroforesis libre. Electroforesis de zona. Electroforesis en geles de poliacrilamida

4. Electroforesis de proteínas en condiciones desnaturalizantes y en condiciones nativas.

5. Técnicas de transferencia para proteínas.

6. Electroenfoque. Electroforesis bidimensional. Visualización de proteínas.

7. Electroforesis de ácidos nucleicos. Técnicas de transferencia para ácidos nucleicos.

8. Aplicaciones de la electroforesis a problemas de interés biológico.

9. Espectrometría de masas.

10. Proteómica cuantitativa

 

 

CENTRIFUGACIÓN

11. Comportamiento de una partícula en un campo centrífugo. Conceptos básicos: velocidad de sedimentación, coeficiente de sedimentación, tiempo de sedimentación, campo centífugo relativo.

12. Tipos de rotores. Tipos de centrífugas. Centrifugación diferencial.

13. Centrifugación en gradiente de densidad. Centrifugación por velocidad de sedimentación. Centrifugación por equilibrio de sedimentación. Diagrama S-.

14. Caracterización de un proceso de purificación de orgánulos subcelulares.

15. Centrifugación analítica: Principios generales y utilidad.

16. Aplicaciones generales de la centrifugación a problemas de interés biológico.

 

 

CROMATOGRAFÍA

17. Técnicas cromatográficas. Introducción. Reparto y adsorción

18. Cromatografía en columna: fundamentos y operaciones básicas.
19. Cromatografía de exclusión molecular: Fundamentos teóricos. Parámetros útiles.

20. Cromatografía de exclusión molecular: Tipos de soportes comerciales: propiedades y elección. Coeficiente de reparto y tamaño molecular.

21. Cromatografía de exclusión molecular: Separación por tamaño, eliminación de sales, cambio de tampón, etc. Ejemplos.

22. Cromatografía de intercambio iónico: Fundamentos teóricos. Tipos de soportes, propiedades y elección.

23: Cromatografía de intercambio iónico: Condiciones de unión de la muestra y de la elución de la misma. Importancia del gradiente de elución.

24. Cromatografía de intercambio iónico: Ventajas del método en columna frente al método por tandas o ‘batch’. Aplicaciones y ejemplos.

25. Cromatografía de afinidad: Fundamentos teóricos. Tipos de soportes. Soportes de grupos específicos. Unión/elución de la muestra.

26. Cromatografía de afinidad: Anticuerpos monoclonales y anticuerpos policlonales en cromatografía de afinidad para el estudio de interacciones entre proteínas. Ensayos de co-inmunoprecipitación.

27. Cromatografía de afinidad: Ensayos de pull-down.

28. Cromatografía líquida de alta resolución: Fundamentos teóricos. Tipos de soportes y su elección. Fase reversa. Ventajas frente a la cromatografía convencional. Aplicaciones.

 

TECNICAS DE MARCAJE DE MACROMOLÉCULAS. INMUNOTÉCNICAS

29. Métodos radioquímicos. Introducción. Leyes de desintegración radiactiva. Análisis de los resultados de las medidas de radiactividad. Autorradiografía.

30. Inmunotécnicas. Tipos de moléculas (antígeno/anticuerpo) con diferentes marcajes y su utilidad. Ventajas de las inmunotécnicas en fase sólida.

31.  Inmunotécnicas cuantitativas (ELISA RIA, etc.)

 

PROGRAMA DE SEMINARIOS

Los seminarios, impartidos en grupos mas reducidos, estarán destinados a la      

         Resolución de problemas

         Discusión de supuestos experimentales

         Comentario y discusión de algunas publicaciones especialmente relevantes para el desarrollo de algunas de las Técnicas de Bioquímica y Biología Molecular.

1.14. Referencias de consulta

OBRAS DE CARÁCTER GENERAL

Entre las obras de carácter general, algunas editadas hace bastantes años, todavía son válidas para comprender algunos aspectos teóricos de las técnicas de separación:

 

         Métodos en Biociencias. Guillermo Bodega. Editorial Dextra.

Técnicas de Bioquímica y Biología Molecular. David Freifelder.          Editorial Reverté. Disponible el texto completo en la red.

         Experimental Techniques in Biochemistry. Edited by Brewer, Pesce   and  Ashworth. Prentice Hall

         Guide to Protein Purification. Edited by Murray P. Deutscher. Methods         in Enzymology. Vol 182. Academia Press, Inc.

         Técnicas Instrumentales de Análisis en Bioquímica. Editor J. G.         Gavilanes. Editoral Síntesis

Principios y técnicas de Bioquímica Experimental. Bryan L. Williams, Keith Wilson. Ed. Omega

Instrumentos y técnicas de Bioquímica. Terrance G. Cooper. Ed. Reverté

An introduction to Practical Biochemistry. David T. Plummer. McGraw-Hill Book Company (UK) Limited (London)

 

OBRAS ESPECIFICAS

La Serie Genérica The Practical Approach Series, editada por Oxford University Press, está integrada por monografías que contiene algunos títulos de interés. Por ejemplo:

 

         Subcellular Fractionation. Edited by J. M. Gram. and D. Rickwood

 

         Gel Electrophoresis of Proteins. Edited by B. D. Hames and D. Rickwood

 

         Gel electrophoresis of Nucleic Acids: A practical approach. Edited    by D. Rickwood and B. D. Hames

        

         Protein Purification Methods. Edited by E. L. V. Harris and S. Angal

        

         Centrifugation. A Practical Approach. Edited by D. Rickwood

 

 

OTRAS OBRAS DE INTERÉS

 

        

         Proteins and Proteomics. Edited by Simpson. Cold Spring Harbor.

 

         Purifying Proteins for Proteomics. Edited by Simpson. Cold Spring      Harbor.

 

 

PAGINAS WEB

 

Existen hoy día un gran número de páginas web muy ilustrativas y didácticas sobre diferentes tipos de técnicas. Por ejemplo:

 

http://www.gelifesciences.com/aptrix/upp01077.nsf/content/protein_purification

 

Esta página ofrece información sobre varias técnicas de purificación de proteínas (principalmente técnicas cromatográficas) y animaciones sencillas que permiten entender de forma clara el fundamento de alguna de ellas.

 

http://www.molecularstation.com/protein

2. Metodologías docentes y tiempo de trabajo del estudiante

2.1. Presencialidad

 

#horas

Porcentaje de actividades presenciales (mínimo 33% del total)

57

Porcentaje de actividades no presenciales

93

 

2.2. Relación de actividades formativas

Actividades presenciales

Nº horas

Clases teóricas en aula

42

Seminarios

 

Clases prácticas en aula

11

Prácticas clínicas

 

Prácticas con medios informáticos

 

Prácticas de campo

 

Prácticas de laboratorio

 

Prácticas externas y/o practicum

 

Trabajos académicamente dirigidos

 

Tutorías

 

Actividades de evaluación

4

Otras

 

 

 

Actividades formativas             Metodología de enseñanza-aprendizaje

 

Clases expositivas                    Clases “magistrales” con soporte de TIC,

                                               complementadas con discusiones con los

                                               estudiantes.

 

Seminarios                               Clases reducidas en la que se resuelven

                                               problemas teóricos y se discuten supuestos

                                               prácticos.

 

Tutorías Individuales                Sesiones concertadas para resolver dudas o

                                               comentar cualquier aspecto específico de la

                                               asignatura

 

Evaluación                               Pruebas orales y/o escritas (parciales y finales)

 

Estudio y trabajo                     Búsqueda de documentación

del Estudiante                          Resolución de problemas y casos prácticos

                                               Estudio y asimilación de los conceptos

                                               básicos de los temas tratados en clase

3. Sistemas de evaluación y porcentaje en la calificación final

3.1. Convocatoria ordinaria

Los resultados del aprendizaje relacionados con las competencias enumeradas anteriormente serán evaluados como sigue:

TEORIA: Habrá un examen final al término del semestre en el que se incluirán todos los contenidos de la asignatura con un valor del 70 % de la nota final.

 

Durante el curso, se tendrá en cuenta la resolución de los problemas propuestos en clase, la participación e implicación en las discusiones, pregunta y debates, así como las evaluaciones de progreso realizadas, con un valor del 30% de la nota final.

 

De esta manera la formación adquirida por el estudiante a lo largo del curso se evaluará mediante diferentes métodos y además se realizará una evaluación final con todo el contenido de la materia con el fin de tener una visión global del aprendizaje y la adquisición de las competencias adquiridas por el estudiante.

3.1.1. Relación actividades de evaluación

Actividad de evaluación

%

Examen final (máximo 70% de la calificación final o el porcentaje que figure en la memoria)

70

Evaluación continua

30

 

3.2. Convocatoria extraordinaria

En la convocatoria extraordinaria  los procedimientos, criterios de evaluación y porcentaje en la calificación final serán los mismos que en la convocatoria ordinaria.

3.2.1. Relación actividades de evaluación

Actividad de evaluación

%

Examen final (máximo 70% de la calificación final o el porcentaje que figure en la memoria)

 

Evaluación continua

 

4. Cronograma orientativo

Semana

Week

 

Contenido

Contents

 

 

Horas presenciales

Contact hours

 

Horas no presenciales

Independent study time

1

FRACCIONAMIENTO

Tema 1

3

                    6

1-2

ELECTROFORESIS

Temas 2-4

4

                     6

2-3

ELECTROFORESIS

Temas 5- 8

5

                     6

3

 

ELECTROFORESIS

Temas 9-10

                       2

                     4

     

 

4-5

CENTRIFUGACION

Temas 11 - 12

                      5

                    6

5-6

CENTRIFUGACION

Temas 13 - 14

                      5

                     6

7

CENTRIFUGACION

Temas 15 - 16

                     2

                    6

7-8

CROMATOGRAFIA

Temas 17-21


                     6

                    9

9

CROMATOGRAFIA

Temas 22-24

                     4

                    6

10-11

CROMATOGRAFIA

Temas 25-28

                     9

                  13

12-13

MARCAJE DE MACROMOLECULAS

Temas 29-31

                     7

                    9